Rote Algen

Rote Algen
Temporaler:
Mesoproterozoisch -present[1][2]
Chondrus crispus - Köhler–s Medizinal-Pflanzen-034.jpg
ANZEIGE : Chondrus Crispus Stackhouse,
E-F: Mastocarpus stellatus J.Ag.
Wissenschaftliche Klassifikation
(umstritten)
Domain: Eukaryota
(unrangiert): Diaphoretickes
(unrangiert): Archaplastida
Aufteilung: Rhodophyta
Wettstein1922
Kladen

Rote Algen, oder Rhodophyta (/rˈdɒfɪtə/, /ˌrdəˈftə/; aus Altgriechisch ῥόδον (Rhódon)'Rose' und φυτόν (Phutón)"Pflanze") sind eine der ältesten Gruppen von eukaryotisch Algen.[3] Die Rhodophyta umfasst auch eine der größten Algenphyla, die über 7.000 derzeit anerkannte Arten mit taxonomischen Revisionen enthält.[4] Die Mehrheit der Arten (6.793) liegt in der Florideophyceae (Klasse) und bestehen meistens aus mehrzellig, Marine Algen, einschließlich vieler bemerkenswerte Seetang.[4][5] Rotalgen sind in Meeresräumen reichlich vorhanden, aber in Freshwaters relativ selten.[6] Ungefähr 5% der Rotalgenarten treten in Süßwasser auf, Umgebungen mit größeren Konzentrationen in wärmeren Bereichen.[7] Mit Ausnahme von zwei Küstenhöhlenarten in der asexuellen Klasse CyanidiophyceaeEs gibt keine terrestrischen Arten, die auf einen evolutionären Engpass zurückzuführen sein können, bei dem der letzte gemeinsame Vorfahren etwa 25% seiner Kerngene und einen Großteil seiner evolutionären Plastizität verlor.[8][9]

Die roten Algen bilden eine unterschiedliche Gruppe, die durch eukaryotische Zellen ohne gekennzeichnet ist Flagella und Centrioles, Chloroplasten Das fehlt extern endoplasmatisches Retikulum und stapelt (Stroma) Thylakoideund verwenden Phykobiliproteine wie Zubehörpigmente, die ihnen ihre rote Farbe geben.[10] Rote Algengeschäft Zucker als Florideaner Stärke, was eine Art von Stärke ist, die aus stark verzweigten besteht Amylopektin ohne Amylose,[11] als Lebensmittel reserviert außerhalb ihrer Plastiden. Die meisten roten Algen sind auch mehrzelligmakroskopisch, marine und sexuell reproduzieren. Die rote Algenlebensgeschichte ist normalerweise eine Generationenwechsel Das kann eher drei Generationen als zwei haben.[12] Das Koralline Algen, was sezernieren Kalziumkarbonat und spielen eine wichtige Rolle beim Aufbau Korallenriffe, Hierher gehören. Rote Algen wie z. Dulse (Palmaria Palmata) und Laver (Nori/Gim) sind ein traditioneller Teil von europäisch und Asiatische Küche und werden verwendet, um andere Produkte herzustellen, z. Agar, Carrageenans und andere Lebensmittelzusatzstoffe.[13]

Evolution

Botryocladia occidentalis Maßstab: 2 cm

Chloroplasten entwickelten sich nach einem Endosymbiotikum Ereignis zwischen einem angestammten, photosynthetischen Cyanobakterium und einem frühen eukaryotischen Phagotroph.[14] Dieses Ereignis (bezeichnet primäre Endosymbiose) führte zum Ursprung des Rotes und grüne Algen, und die Glaukophyten, die die ältesten evolutionären Linien von photosynthetischen Eukaryoten ausmachen.[15] Ein sekundäres Endosymbiose -Ereignis, an dem eine rote Alge und a Heterotrophe Eukaryote führte zur Entwicklung und Diversifizierung mehrerer anderer photosynthetischer Linien wie z. Cryptophyta, Haptophyta, Stramenopiles (oder Heterokontophyta), und Alveolata.[15] Zusätzlich zu mehrzelligen braunen Algen wird geschätzt, dass mehr als die Hälfte aller bekannten Arten von mikrobiellen Eukaryoten rot-alga-abgeleitete Plastiden haften.[16]

Rote Algen werden in die unterteilt Cyanidiophyceae, eine Klasse von Einenzichellern und Thermozidophil Extremophile gefunden in schwefelischen heißen Quellen und anderen sauren Umgebungen,[17] eine Anpassung teilweise ermöglicht durch Horizontales Gentransfers von prokaryoten,[18] mit etwa 1% ihres Genoms haben diesen Ursprung,[19] und zwei Schwesterkladen namens SCRP (Stylonematophyceae, Compsopogonophyceae, Rhodellophyceae und Porphyridiophyceae) und bf (Bangiophyceae und Florideophyceae), die sowohl in Meeres- als auch in Süßwasserumgebungen vorkommen. Die SCRP -Klade sind Mikroalgen, bestehend aus einzelligen Formen und mehrzellulären mikroskopischen Filamenten und Klingen. Die BF sind Makroalgen, Seetang, die normalerweise nicht mehr als 50 cm lang wachsen, aber einige Arten können eine Länge von 2 m erreichen.[20] Die meisten Rhodophyten sind marine mit einer weltweiten Verteilung und werden im Vergleich zu anderen Seetang häufig in größeren Tiefen gefunden. Während dies früher auf das Vorhandensein von Pigmenten zurückzuführen war (wie z. Phycoerythrin) Das würde es rote Algen ermöglichen, größere Tiefen als andere Makroalgen durch chromatische Anpassung zu bewohnen, neuere Beweise sind in Frage gestellt (z. B. die Entdeckung von grünen Algen in großer Tiefe auf den Bahamas).[21] Einige Meeresarten sind an sandigen Ufern zu finden, während die meisten anderen an felsigen Substraten befestigt sind.[22] Süßwasserarten machen 5% der roten Algenvielfalt aus, haben aber auch eine weltweite Verteilung in verschiedenen Lebensräumen.[7] Sie bevorzugen im Allgemeinen saubere, hochströmende Ströme mit klarem Wasser und felsigen Böden, jedoch mit einigen Ausnahmen.[23] Einige Süßwasserarten sind in schwarzen Gewässern mit sandigen Böden zu finden [24] und noch weniger werden in mehr gefunden linsen Wasser.[25] Sowohl Meeres- als auch Süßwasser-Taxa werden durch frei lebende makroalgene Formen und kleinere Endo/Epiphytik-/Zoikformen dargestellt, was bedeutet, dass sie in oder in anderen Algen, Pflanzen und Tieren leben.[10] Darüber hinaus haben einige Meeresarten einen parasitären Lebensstil übernommen und können in eng oder weiter verwandten roten Algenwirten gefunden werden.[26][27]

Taxonomie

Im System von ADL et al. 2005 werden die roten Algen in der klassifiziert Archaplastida, zusammen mit Glaukophyten und grüne Algen plus Landpflanzen (Viridiplantae oder Chloroplastida). Die Autoren verwenden eine hierarchische Anordnung, bei der die Kladennamen keinen Rang bezeichnen. Der Klassenname Rhodophyceae wird für die roten Algen verwendet. Es werden keine Unterteilungen angegeben; Die Autoren sagen: "Traditionelle Untergruppen sind künstliche Konstrukte und nicht mehr gültig."[28]

Viele seit ADL veröffentlichte Studien et al. 2005 haben Beweise vorgelegt, die sich in der Archaplastida (einschließlich Rotalgen) einig sind.[29][30][31][32] Andere Studien haben jedoch darauf hingewiesen, dass Archaplastida ist paraphyletisch.[33][34] Ab Januar 2011, Die Situation erscheint ungelöst.

Im Folgenden finden Sie weitere veröffentlichte Taxonomien der roten Algen unter Verwendung molekularer und traditioneller alpha -taxonomischer Daten. Die Taxonomie der roten Algen befindet sich jedoch immer noch in einem Flusszustand (mit Klassifizierung über dem Niveau von bestellen die meiste Zeit des 20. Jahrhunderts wenig wissenschaftliche Aufmerksamkeit erhalten.[35]

  • Wenn man das Königreich Plantae als die Archaplastida definiert, werden die roten Algen Teil dieses Königreichs sein.
  • Wenn Plantae enger definiert werden, um das Viridiplantae zu sein, können die roten Algen als ihr eigenes Reich oder ein Teil des Königreichs angesehen werden Protista.

Eine wichtige Forschungsinitiative zur Rekonstruktion des roten Algenbaums des Lebens (Redtol) Verwenden phylogenetisch und genomisch Ansatz wird durch die finanziert Nationale Wissenschaftsstiftung Im Rahmen des Programms des Baumes von Leben.

Klassifizierungsvergleich

Klassifizierungssystem nach
Saunders und Hommersand 2004
[35]
Klassifizierungssystem nach
Hwan Su Yoon et al. 2006
[36]
Aufträge Multicelluar? Pit -Stecker? Beispiel
Cyanidiales Nein Nein Cyanidioschyzon Merolae
  • Subphylum rhodophytina Subphylum Novus
Rhodellales Nein Nein Rhodella
CompSopogonales, Rhodochaetales, Erythropeltidales Ja Nein Compsopogon
Rufusiales, Stylonematales Ja Nein Stylonema

Bangiales

Ja Ja Bangia, "Porphyra"

Porphyridiales

Nein Nein Porphyridium cruentum
Hildenbrandiales Ja Ja Hildenbrandia
Batrachospermales, Balliales, Balbianiales, NemalialesColaconematales, Acrochaetiales, Palmariales, Thorales Ja Ja Nemalion
Rhodogorgonales, Korallinales Ja Ja Corallina officinalis
  • Subklasse Ahnfeltiophycidae
Ahnfeltiales, Pihiellales Ja Ja Ahnfeltia
Bonnemaisoniales, Gigartinales, Gelidiales, Gracilariales, Halymeniales, Rhodymeniales, Nemastomatales, Plocamiales, Keramiales Ja Ja Gelidium

Einige Quellen (wie Lee) geben alle roten Algen in die Klasse "Rhodophyceae". (Die Organisation von Lee ist keine umfassende Klassifizierung, sondern eine Auswahl von Bestellungen, die als üblich oder wichtig angesehen werden.[37]))

Ein Subphylum - Proteorhodophytina - wurde vorgeschlagen, um die vorhandenen Klassen zu umfassen Compsopogonophyceae, Porphyridiophyceae, Rhodellophyceae und Stylonematophyceae.[38] Dieser Vorschlag wurde auf der Grundlage der Analyse der Plastid -Genome vorgenommen.

Rotalgenarten

Derzeit werden über 7.000 Arten für die roten Algen beschrieben,[4] Die Taxonomie ist jedoch in ständigem Fluss mit neuen Arten, die jedes Jahr beschrieben werden.[35][36] Die überwiegende Mehrheit von ihnen ist marine mit etwa 200, die nur in leben frisches Wasser.

Einige Beispiele für Arten und Gattungen von roten Algen sind:

Morphologie

Die rote Algenmorphologie reicht vielfältig von Einenzichellig Formen zu komplexen parenchymatösen und nicht parenchymatösen Thallus.[39] Rote Algen haben doppelt Zellwände.[40] Die äußeren Schichten enthalten die Polysaccharide Agarose und Agaropektin, das durch Kochen als Kochen aus den Zellwänden extrahiert werden kann Agar.[40] Die inneren Wände sind meistens Cellulose.[40] Sie haben auch die gen-reichsten Plastid-Genome, die bekannt sind.[41]

Zellstruktur

Rote Algen haben während ihres gesamten Lebenszyklus keine Flagellen und Zentriolen. Vorhandensein normaler Spindelfasern, Mikrotubuli, nicht gestapelte photosynthetische Membranen, Vorhandensein von Phycobilin-Pigmentgranulat,[42] Das Vorhandensein einer Pit -Verbindung zwischen filamentösen Gattungen von Zellen, das Fehlen von Chloroplasten endoplasmatischem Retikulum ist die Unterscheidungsmerkmale der roten Algenzellstruktur.[43]

Chloroplasten

Vorhandensein der wasserlöslichen Pigmente genannt Phykobiline (Phycocyanobilin, Phycoerythrobilin, Phycourobilin und Phykobiliviolin), die in lokalisiert sind in Phykobilisomen, gibt rote Algen ihre unverwechselbare Farbe.[44] Chloroplast Enthält gleichmäßig verteilte und ungruppierte Thylakoide.[45] Andere Pigmente umfassen Chlorophyll A, α- und β-Carotin, Lutein und Zeaxanthin. Die Doppelmembran der Chloroplastenhülle umgibt den Chloroplasten. Das Fehlen von Grana und die Anhaftung von Phykobilisomen auf der Stromazusoberfläche der Thylakoidmembran sind weitere Unterscheidungsmerkmale von rotem Algenchloroplasten.[46]

Speicherprodukte

Zu den wichtigsten Photosynthetikprodukten gehören Floridosid (Hauptprodukt), D -Ifloridosid, Digeneeasid, Mannit, Sorbit, Dulcitol usw.[47] Florideaner Stärke (ähnlich wie Amylopectin in Landpflanzen), einem langfristigen Speicherprodukt, wird im Zytoplasma frei (verstreut) abgelagert.[48] Die Konzentration an photosynthetischen Produkten wird durch die Umgebungsbedingungen wie Veränderung des pH -Werts, den Salzgehalt des Mediums, die Veränderung der Lichtintensität, die Nährstoffbeschränkung usw. verändert.[49] Wenn der Salzgehalt des Mediums erhöht wird, wird die Produktion von Floridosid erhöht, um zu verhindern, dass Wasser die Algenzellen verlässt.

Grubenverbindungen und Boxenstopfen

Grubenverbindungen

Grubenverbindungen und Pit -Stecker sind einzigartige und charakteristische Merkmale von roten Algen, die sich während des Prozesses bilden Zytokinese folgen Mitose.[50][51] Bei roten Algen ist die Cytokinese unvollständig. Typischerweise bleibt eine kleine Pore in der Mitte der neu geformten Partition. Die Grubenverbindung wird gebildet, wo die Tochterzellen in Kontakt bleiben.

Kurz nachdem die Pit -Verbindung hergestellt wurde, wird die zytoplasmatische Kontinuität durch die Erzeugung eines Pit -Steckers blockiert, der in der Wandlücke abgelagert wird, die die Zellen verbindet.

Verbindungen zwischen Zellen mit einer gemeinsamen Elternzelle werden als primäre Grubenverbindungen bezeichnet. Da apikales Wachstum Ist die Norm in roten Algen, die meisten Zellen haben zwei primäre Grubenverbindungen, eine zu jeder benachbarten Zelle.

Verbindungen, die zwischen Zellen existieren, die sich nicht einer gemeinsamen Elternzelle teilen, sind mit einem sekundären Grubenverbindungen gekennzeichnet. Diese Verbindungen werden hergestellt, wenn eine ungleiche Zellteilung eine kernhaltige Tochterzelle erzeugte, die dann zu einer benachbarten Zelle verschmilzt. Muster sekundärer Grubenverbindungen sind in der Reihenfolge zu sehen Keramiales.[51]

Pit -Stecker

Nachdem eine Grubenverbindung gebildet wurde, treten tubuläre Membranen auf. Ein körniges Protein, das als Plug -Kern bezeichnet wird, bildet sich dann um die Membranen. Die röhrenförmigen Membranen verschwinden schließlich. Während einige Ordnungen von roten Algen einfach einen Steckerkern haben, haben andere eine assoziierte Membran auf jeder Seite der Proteinmasse, die als CAP -Membranen bezeichnet wird. Der Pit -Stecker existiert weiterhin zwischen den Zellen, bis einer der Zellen stirbt. In diesem Fall erzeugt die lebende Zelle eine Schicht Wandmaterial, die den Stecker abdichtet.

Funktion

Es wurde vorgeschlagen, dass die Grubenverbindungen als strukturelle Verstärkung oder als Wege für die Kommunikation und den Transport von Zellen zu Zellen in roten Algen fungieren. Nur wenige Daten stützen diese Hypothese.[52]

Reproduktion

Der Fortpflanzungszyklus von roten Algen kann durch Faktoren wie die Tageslänge ausgelöst werden.[3] Rotalgen reproduzieren sich sowohl sexuell als auch asexuell. Eine asexuelle Reproduktion kann durch die Produktion von Sporen und vegetativen Mitteln (Fragmentierung, Zellteilung oder Propagulesproduktion) auftreten.[53]

Düngung

Rote Algen fehlen Motil Sperma. Daher verlassen sie sich auf Wasserströmungen, um ihre zu transportieren Gameten an die weiblichen Organe - obwohl ihr Sperma in der Lage ist, zu a zu "gleiten" KarpogoniumTrichogyne.[3]

Das Trichogyne wird weiter wachsen, bis es a Spermatium; Sobald es befruchtet wurde, wird die Zellwand an ihrer Basis zunehmend verdickt und trennt sie vom Rest des Karpogoniums an seiner Basis.[3]

Nach ihrer Kollision lösen sich die Wände des Spermatiums und des Karpogoniums auf. Der männliche Kern teilt sich und bewegt sich in das Karpogonium; Eine Hälfte des Kerns verschmilzt mit dem Kern des Carpogoniums.[3]

Das Polyamin Spermine wird produziert, was die Produktion der Karteisposporen auslöst.[3]

Spermatangie Kann lange, heikle Anhänge haben, die ihre Chancen auf "Verbindung" erhöhen.[3]

Lebenszyklus

Sie zeigen Generationenwechsel. Zusätzlich zu a Gametophyten Generation haben zwei zwei Sporophyte Generationen, die Carposporophyten-produzieren Carposporen, was zu einem keimen Tetrasporophyte - Dies erzeugt Sporen -Tetraden, die in Gametophyten dissoziieren und keimen.[3] Der Gametophyten ist typisch (aber nicht immer) identisch mit dem Tetrasporophyten.[54]

Carposporen können auch direkt in die Keime keimen Thalloid Gametophyten oder die Carposporophyten können eine Tetraspore produzieren, ohne eine (frei lebende) Tetrasporophytenphase zu durchlaufen.[54] Tetrasporangie kann in einer Reihe angeordnet sein (Zonat), in einem Kreuz (Kreuz) oder in einer Tetrade.[3]

Der Carposporophyten kann in den Gametophyten eingeschlossen sein, der ihn mit Zweigen bedecken kann, um a zu bilden Zystokarp.[54]

Die beiden folgenden Fallstudien können hilfreich sein, um einige der Lebensgeschichten zu verstehen, die Algen darstellen können:

In einem einfachen Fall wie z. Rhodochorton Investiens:

Im Carposporophyten: Ein Spermatium verschmilzt mit einem Trichogyne (ein langes Haar auf dem weiblichen sexuellen Organ), das dann zu einer Karposporangie bildet - die Carposporen produziert.
Carposporen keimen zu Gametophyten, die Sporophyten produzieren. Beide sind sehr ähnlich; Sie produzieren Monosporen aus Monosporangia "direkt unter einer Querwand in einem Filament"[3] und ihre Sporen werden "durch die Spitze der Sporangialzelle befreit".[3]
Die Sporen eines Sporophyten produzieren entweder Tetrasporophyten. Monosporen, die von dieser Phase erzeugt werden, keimt sofort ohne Ruhephase, um eine identische Kopie des übergeordneten übereinzustimmen. Tetrasporophyten können auch einen Carpospore produzieren, der zu einem anderen Tetrasporophyten keimt.[Überprüfung erforderlich][3]
Der Gametophyten kann mit Monosporen replizieren, produziert jedoch Spermien in Spermatangien und "Eier" (?) In Carpogonium.[3]

Ein ziemlich anderes Beispiel ist Porphyra Gardneri:

In seinem diploid Phase kann ein Carpospore keimen, um eine filamentöse "Conchocelis-Stufe" zu bilden, die auch mit Monosporen selbst wiedererlangt kann. Die Conchocelis -Bühne produziert schließlich Conchosporangia. Das resultierende Conchospore keimt keimt, um ein winziges zu bilden POTHALLUS mit Rhizoide, der sich zu einem CM-Maßstab entwickelt. Auch dies kann sich über Monosporen reproduzieren, die im Thallus selbst hergestellt werden.[3] Sie können auch über Spermatien reproduzieren, die intern produziert werden und die für ein prospektives Carpogonium in IHS erfüllt sind Konzeption.[3]

Chemie

Algengruppe δ13C Bereich[55]
HCO3-Verbrauch rote Algen –22,5 ‰ bis –9,6 ‰
CO2-Rot -Algen –34,5 ‰ bis –29.9 ‰
Braunalgen –20,8 ‰ bis –10,5 ‰
Grüne Algen –20,3 ‰ bis –8,8 ‰

Das δ13C Die Werte von roten Algen spiegeln ihren Lebensstil wider. Der größte Unterschied resultiert aus ihrer Photosynthese Stoffwechselweg: Algen, die verwenden HCO3 als Kohlenstoffquelle haben weniger negativ δ13C Werte als solche, die nur verwenden CO2.[55] Eine zusätzliche Differenz von etwa 1,71 ‰ trennt Gruppen Gezeiten von denen unter der niedrigsten Gezeitenlinie, die niemals atmosphärischem Kohlenstoff ausgesetzt sind. Die letztere Gruppe benutzt je mehr 13C-negative co2 In Meerwasser gelöst, während diejenigen, die Zugang zu atmosphärischem Kohlenstoff haben, die positivere Signatur dieser Reserve widerspiegeln.

Photosynthetische Pigmente von Rhodophyta sind Chlorophylle a und d. Rote Algen sind rot aufgrund Phycoerythrin. Sie enthalten das sulfatierte Polysaccharid Carrageenan in den amorphen Abschnitten ihrer Zellwände, obwohl rote Algen der Gattung Porphyra enthalten Porphyran. Sie produzieren auch eine bestimmte Art von Tannin genannt Phlorotannine, aber in einer niedrigeren Menge als braune Algen.

Genome und Transkriptome von roten Algen

Wie in readb, eingetragen,[56] 27 Komplette Transkriptome und 10 komplette Genomesequenzen von roten Algen sind verfügbar. Nachfolgend sind die 10 vollständigen Genome von roten Algen aufgeführt.

Fossilien

Eines der ältesten Fossilien, die als roter Alge identifiziert wurden, ist auch das älteste Fossil Eukaryote das gehört zu einer bestimmten Moderne Taxon. Bangiomorpha pubescens, ein mehrzelliges Fossil aus der Arktis Kanada, ähnelt stark der modernen roten Alge Bangia und tritt in Felsen auf 1,05 Milliarden Jahre vor.[2]

Zwei Arten von Fossilien, die rote Algen ähneln, wurden zwischen 2006 und 2011 in gut erhaltenen Sedimentgesteinen in Chitrakoot, Zentralindien, in gut erhaltenen Sedimentgesteinen gefunden. Die vermuteten roten Algen liegen in fossilen Matten von Cyanobakterien eingebettet, als Stromatolithe in 1,6 Milliarden Jahre altem indischem Phosphor-Phosphor genannt werden und sie zu den ältesten pflanzenartigen Fossilien, die jemals in etwa 400 Millionen Jahren gefunden wurden, und sie.[68]

Rotalgen sind wichtige Bauherren von Kalkstein Riffe. Die frühesten solcher korallinen Algen, die Solenoporen, sind aus dem bekannt Cambrian Zeitraum. Andere Algen unterschiedlicher Herkunft spielten spät eine ähnliche Rolle Paläozoikumund in neueren Riffen.

Calcit Krusten, die als die Überreste von korallinen roten Algen interpretiert wurden, stammen aus dem Ediacaran Zeitraum.[69] Thalophyten Die rot korallinen roten Algen ähneln aus dem späten Proterozoikum DOUSHANTUO -Bildung.[70]

Beziehung zu anderen Algen

Chromista und Alveolata Algen (z. B. Chrysophyten, Diatomeen, Phaeophyten, Dinophyten) scheinen sich aus entwickelt zu haben Bikonts die rote Algen als erworben haben Endosymbionten. Nach dieser Theorie haben sich diese Endosymbiont -Rotalgen im Laufe der Zeit zu Chloroplasten entwickelt. Dieser Teil von Endosymbiotische Theorie wird von verschiedenen strukturellen und unterstützt genetisch Ähnlichkeiten.[71]

Menschlicher Verbrauch

Rote Algen haben eine lange Anamnese der Verwendung als Quelle für Ernährungsnahrungsmittel, funktionelle Lebensmittelzutaten und pharmazeutische Substanzen.[72] Sie sind eine Quelle von Antioxidantien, einschließlich Polyphenolen und Phykobiliproteinen[73] und enthalten Proteine, Mineralien, Spurenelemente, Vitamine und essentielle Fettsäuren.[74][75] Traditionell werden rote Algen roh gegessen, in Salaten, Suppen, Mahlzeiten und Gewürzen. Mehrere Arten sind Lebensmittelpflanzen, insbesondere Mitglieder der Gattung Porphyra, unterschiedlich bekannt als Nori (Japan), Gim (Korea), 紫菜 (China). Laver und Dulse (Palmaria Palmata)[76] werden in Großbritannien konsumiert.[77] Einige der roten Algenarten mögen Gracilaria und Laurencia sind reich an polyungesättigten Fettsäuren (Eicopentaensäure, Docohexaensäure, Arachidonsäure)[78] und haben einen Proteingehalt bis zu 47% der gesamten Biomasse.[72] Wenn ein großer Teil der Weltbevölkerung die tägliche Jodaufnahme unzureichend erhält, wird von einem einzigen Gramm roter Algen ein Jodanforderung von 150 ug/Tag erhalten.[79] Rote Algen wie Gracilaria, Gelidium, Euchema, Porphyra, Acanthophora, und Palmaria sind in erster Linie für ihren industriellen Gebrauch für Phycocolloide (Agar, Algin, Furcellaran und Carrageenan) als Verdickungsmittel, Textilien, Lebensmittel, Antikoagulanzien, Wasserbindungsmittel usw. bekannt.[80] Dulse (Palmaria Palmata) ist eine der am meisten verbrauchten roten Algen und eine Quelle für Jod, Protein, Magnesium und Kalzium. [81]China, Japan, Republik Korea sind die Top -Produzenten von Algen.[82] In Ost- und Südostasien, Agar wird am häufigsten aus produziert Gelidium amansii. Diese Rhodophyten sind leicht zu wachsen und zum Beispiel, zum Beispiel, Nori Der Anbau in Japan geht mehr als drei Jahrhunderte zurück.

Galerie

Rhodophyta (rote Algen)

Siehe auch

Verweise

  1. ^ N. J. Butterfield (2000). "Bangiomorpha pubescens n. Gen., n. SP.: Auswirkungen auf die Entwicklung von Sex, Mehrzelligkeit und Mesoproterozoikum/Neoproterozoikum von Eukaryoten ". Paläobiologie. 26 (3): 386–404. doi:10.1666/0094-8373 (2000) 026 <0386: bpngns> 2.0.co; 2;. ISSN 0094-8373. S2CID 36648568.
  2. ^ a b T.M. Gibson (2018). "Präzises Alter von Bangiomorpha pubescens datiert den Ursprung der eukaryotischen Photosynthese". Geologie. 46 (2): 135–138. Bibcode:2018Geo .... 46..135g. doi:10.1130/g39829.1.
  3. ^ a b c d e f g h i j k l m n o Lee, R.E. (2008). Phykologie (4. Aufl.). Cambridge University Press. ISBN 978-0-521-63883-8.
  4. ^ a b c Guiry, M.D.; Guiry, G.M. (2016). "Algäebase". www.algaebase.org. Abgerufen 20. November, 2016.
  5. ^ D. Thomas (2002). Seetang. Lebensreihe. Naturkundemuseum, London. ISBN 978-0-565-09175-0.
  6. ^ Dodds, Walter K. (Walter Kennedy), 1958- (7. Mai 2019). Süßwasserökologie: Konzepte und Umweltanwendungen der Limnologie. While, Matt R. (dritter Aufl.). London, Vereinigtes Königreich. ISBN 9780128132555. OCLC 1096190142.{{}}: Cs1 montiert: Mehrfachnamen: Autorenliste (Link)
  7. ^ a b Sheath, Robert G. (1984). "Die Biologie von Süßwasser -Rotalgen". Fortschritt phykologische Forschung. 3: 89–157.
  8. ^ Warum leben wir nicht auf einem roten Planeten?
  9. ^ Azua-bustos, a; González-Silva, C; Arenas-Fajardo, C; Vicuña, R (2012). "Extreme Umgebungen als potenzielle Treiber der konvergenten Evolution durch Exaptation: Der Fall der Atacama -Wüstenküste". Frontmikrobiol. 3: 426. doi:10.3389/fmicb.2012.00426. PMC 3526103. PMID 23267354.
  10. ^ a b W. J. Woelkerling (1990). "Eine Einleitung". In K. M. Cole; R. G. SHEATH (Hrsg.). Biologie der roten Algen. Cambridge University Press, Cambridge. S. 1–6. ISBN 978-0-521-34301-5.
  11. ^ Viola, R.; Nyvall, P.; Pederén, M. (2001). "Die einzigartigen Merkmale des Stärkemetabolismus in roten Algen". Verfahren der Royal Society of London B. 268 (1474): 1417–1422. doi:10.1098/rspb.2001.1644. PMC 1088757. PMID 11429143.
  12. ^ "Algen". autocww.colorado.edu.
  13. ^ M. D. Guiry. "Rhodophyta: Rote Algen". Nationale Universität von Irland, Galway. Archiviert von das Original Am 2007-05-04. Abgerufen 2007-06-28.
  14. ^ Gould, S.B.; Waller, R.F.; McFadden, G.I. (2008). "Plastid Evolution". Annual Review of Plant Biology. 59: 491–517. doi:10.1146/annurev.arplant.59.032607.092915. PMID 18315522. S2CID 30458113.
  15. ^ a b McFadden, G.I. (2001). "Primäre und sekundäre Endosymbiose und die Entwicklung von Plastiden". Journal of Phycology. 37 (6): 951–959. doi:10.1046/j.1529-8817.2001.01126.x. S2CID 51945442.
  16. ^ Stehlen Sie meinen Sonnenschein | Das Scientist Magazine
  17. ^ Ciniglia, C.; Yoon, H.; Pollio, a.; Bhattacharya, D. (2004). "Versteckte Artenvielfalt der extremophilen Cyanidien rote Algen". Molekulare Ökologie. 13 (7): 1827–1838. doi:10.1111/j.1365-294x.2004.02180.x. PMID 15189206. S2CID 21858509.
  18. ^ Pflanzen und Tiere nehmen manchmal Gene aus Bakterien ein, untersucht Algen - suggerisch - Sciencemag.org
  19. ^ Die Genome von polyextremophilen Cyanidien enthalten 1% horizontal übertragene Gene mit verschiedenen adaptiven Funktionen
  20. ^ Brawley, Sh (2017). "Einblicke in die roten Algen und die eukaryotische Entwicklung aus dem Genom von Porphyra Nabelisch (Bangiophyceae, Rhodophyta) ". Verfahren der Nationalen Akademie der Wissenschaften der Vereinigten Staaten von Amerika. 114 (31): e6361–e6370. doi:10.1073/pnas.1703088114. PMC 5547612. PMID 28716924.
  21. ^ Norris, J. N.; Olsen, J. L. (1991). "Tiefwassergrünalgen aus den Bahamas, einschließlich Cladophora vandenhoekii sp. Nov. (Cladophorales) ". Phykologia. 30 (4): 315–328. doi:10.2216/i0031-8884-30-4-315.1. ISSN 0031-8884.
  22. ^ Kain, J.M.; Norton, T.A. (1990). "Meeresökologie". In Cole, J. M.; Scheide, R.G. (Hrsg.). Biologie der roten Algen. Cambridge, U.K.: Cambridge University Press. S. 377–423. ISBN 978-0521343015.
  23. ^ Eloranta, P.; Kwandrans, J. (2004). "Indikatorwert von Süßwasser -Rotalgen in laufenden Gewässern für die Bewertung der Wasserqualität" (PDF). Internationales Journal für Ozeanographie und Hydrobiologie. Xxxiii (1): 47–54. ISSN 1730-413x. Archiviert von das Original (PDF) Am 2011-07-27.
  24. ^ Vis, M. L.; SHEATH, R.G.; Chiason, W.B. (2008). "Eine Übersicht über Rhodophyta und assoziierte Makroalgen aus Küstenströmen in Französisch -Guayana". Cryptogamie Algologie. 25: 161–174.
  25. ^ SHEATH, R.G.; Hambrook, J.A. (1990). "Süßwasserökologie". In Cole, K.M.; Scheide, R.G. (Hrsg.). Biologie der roten Algen. Cambridge, U.K.: Cambridge University Press. S. 423–453. ISBN 978-0521343015.
  26. ^ Goff, L. J. (1982). "Die Biologie der parasitären roten Algen". Fortschritt phykologische Forschung. 1: 289–369.
  27. ^ Salomaki, E.D.; Lane, C. E. (2014). "Sind alle roten Algenparasiten aus dem gleichen Tuch geschnitten?". Acta Societatis Botanicorum Poloniae. 83 (4): 369–375. doi:10.5586/ASBP.2014.047.
  28. ^ Adl, Sina M.; et al. (2005). "Die neue Klassifizierung von Eukaryoten auf höherer Ebene mit Schwerpunkt auf der Taxonomie der Protisten". Journal of Eukaryotic Microbiology. 52 (5): 399–451. doi:10.1111/j.1550-7408.2005.00053.x. PMID 16248873. S2CID 8060916.
  29. ^ Fabien Burki; Kamran Shalchian-tabrizi; Marianne Minge; Åsmund Skjæveland; Sergey I. Nikolaev; Kjetill S. Jakobsen; Jan Pawlowski (2007). Butler, Geraldine (Hrsg.). "Phylogenomics formt die eukaryotischen Supergruppen neu". PLUS EINS. 2 (8): e790. Bibcode:2007PLOSO ... 2..790B. doi:10.1371/journal.pone.0000790. PMC 1949142. PMID 17726520.
  30. ^ Burki, Fabien; Inagaki, Yuji; Bråte, Jon; Archibald, John M.; Keeling, Patrick J.; Cavalier-Smith, Thomas; Sakaguchi, Miako; Hashimoto, Tetsuo; Horak, Ales; Kumar, Surendra; Klaveness, Dag; Jakobsen, Kjetill S.; Pawlowski, Jan; Shalchian-tabrizi, Kamran (2009). "Große phylogenomische Analysen zeigen, dass zwei rätselhafte Protistenlinien, Telonämie und Centroheliozoa, mit photosynthetischen Chromalveolaten zusammenhängen". Genombiologie und -entwicklung. 1: 231–8. doi:10.1093/gbe/evp022. PMC 2817417. PMID 20333193.
  31. ^ Cavalier-Smith, Thomas (2009). "Königreiche Protozoen und Chromista und die eozoische Wurzel des eukaryotischen Baumes". Biologiebriefe. 6 (3): 342–5. doi:10.1098/rsbl.2009.0948. PMC 2880060. PMID 20031978.
  32. ^ Rogozin, I.B.; Basu, M.K.; Csürös, M. & Koonin, E.V. (2009). "Die Analyse seltener genomischer Veränderungen stützt die Unikont -Bikont -Phylogenie nicht und schlägt die zyanobakterielle Symbiose als Punkt der primären Strahlung von Eukaryoten nahe.". Genombiologie und -entwicklung. 1: 99–113. doi:10.1093/gbe/evp011. PMC 2817406. PMID 20333181.
  33. ^ Kim, E.; Graham, L.E. & Graham, Linda E. (2008). Redfield, Rosemary Jeanne (Hrsg.). "Die EEF2 -Analyse stellt die Monophyse von Archaeplastida und Chromalveolata heraus" herausfordert ". PLUS EINS. 3 (7): E2621. Bibcode:2008PLOSO ... 3.2621K. doi:10.1371/journal.pone.0002621. PMC 2440802. PMID 18612431.
  34. ^ Nozaki, H.; Maruyama, S.; Matsuzaki, M.; Nakada, T.; Kato, S.; Misawa, K. (2009). "Phylogenetische Positionen von Glaukophyta, grünen Pflanzen (Archaeplastida) und Haptophyta (Chromalveolata), die sich aus sich langsam entwickelnden Kerngenen abgeben". Molekulare Phylogenetik und Evolution. 53 (3): 872–880. doi:10.1016/j.ympev.2009.08.015. PMID 19698794.
  35. ^ a b c G. W. Saunders & M. H. Hommersand (2004). "Bewertung der supraordinalen Vielfalt und Taxonomie der roten Algen im Kontext zeitgenössischer systematischer Daten". American Journal of Botanik. 91 (10): 1494–1507. doi:10.3732/AJB.91.10.1494. PMID 21652305. S2CID 9925890.
  36. ^ a b Hwan Su Yoon; K. M. Müller; R. G. SHEATH; F. D. Ott & D. Bhattacharya (2006). "Definieren der Hauptlinien von roten Algen (Rhodophyta)" (PDF). Journal of Phycology. 42 (2): 482–492. doi:10.1111/j.1529-8817.2006.00210.x. S2CID 27377549.
  37. ^ Robert Edward Lee (2008). Phykologie. Cambridge University Press. pp.107. ISBN 978-0-521-68277-0. Abgerufen 31. Januar 2011.
  38. ^ Muñoz-Gómez, SA; Mejía-Franco, FG; Durnin, K; Colp, m; Grisdale, CJ; Archibald, JM; Ch, Slamovits (2017). "Die neue rote Algen -Subphylum proteorhodophytina umfasst die größten und divergentesten Plastid -Genome, die bekannt sind". Curr Biol. 27 (11): 1677–1684. doi:10.1016/j.cub.2017.04.054. PMID 28528908.
  39. ^ Goff, L. J.; Coleman, A. W. (1986). "Ein neuartiges Muster der Polyploidie der apikalen Zell, eine sequentielle Polyploidie -Reduktion und interzelluläre Kerntransfer in der roten Alga -Polysiphonie". American Journal of Botanik. 73 (8): 1109–1130. doi:10.1002/j.1537-2197.1986.tb08558.x.
  40. ^ a b c Fritsch, F. E. (1945), Die Struktur und Reproduktion der Algen, Cambridge: Cambridge Univ. Drücken Sie, ISBN 0521050421, OCLC 223742770
  41. ^ Janouškovec, Jan; Liu, Shao-Lun; Martone, Patrick T.; Carré, Wilfrid; Leblanc, Catherine; Collén, Jonas; Keeling, Patrick J. (2013). "Evolution von roten Algenplastidengenomen: Alte Architekturen, Introns, horizontale Gentransfer und taxonomischer Nützlichkeit von Plastidenmarkern". PLUS EINS. 8 (3): E59001. Bibcode:2013PLOSO ... 859001J. doi:10.1371/journal.pone.0059001. PMC 3607583. PMID 23536846.
  42. ^ W. J. Woelkerling (1990). "Eine Einleitung". In K. M. Cole; R. G. SHEATH (Hrsg.). Biologie der roten Algen. Cambridge University Press, Cambridge. S. 1–6. ISBN978-0-521-34301-5.
  43. ^ Scott, J.; Cynthia, b.; Schornstein, K.; Thomas, J. (1980). "Ultrastruktur der Zellteilung und der Fortpflanzungsdifferenzierung männlicher Pflanzen in der Florideophyceae (Rhodophyta): Zellteilung in Polysiphonia1". Journal of Phycology. 16 (4): 507–524. doi:10.1111/j.1529-8817.1980.tb03068.x. S2CID 83062611.
  44. ^ Gantt, E (1969). "Eigenschaften und Ultrastruktur von Phycoerythrin aus Porphyridium cruentum12". Pflanzenphysiologie. 44 (11): 1629–1638. doi:10.1104/S.44.11.1629. PMC 396315. PMID 16657250.
  45. ^ Die feine Struktur von Algenzellen, 1. Auflage. (n.d.). Abgerufen am 16. Oktober 2019 von https://www.elsevier.com/books/the-fine-structure-of-algal-cells/dodge/978-0-12-219150-3
  46. ^ Tsekos, i.; Reiss, H.D.; Orfanidis, S.; Orologas, N. (1996). "Ultrastruktur und supramolekulare Organisation von Photosynthesemembranen einiger marinen roten Algen". Neuer Phytologe. 133 (4): 543–551. doi:10.1111/j.1469-8137.1996.tb01923.x.
  47. ^ Karsten, U.; West, J. A.; Zuccarello, G. C.; Engbrodt, R.; Yokoyama, A.; Hara, Y.; Brodie, J. (2003). "Kohlenhydrate des Molekulargewichts der Bangiophycidae (Rhodophyta) 1". Journal of Phycology. 39 (3): 584–589. doi:10.1046/j.1529-8817.2003.02192.x. S2CID 84561417.
  48. ^ Lee, R. E. (1974). Chloroplastenstruktur und Stärkekornproduktion als phylogenetische Indikatoren in der unteren Rhodophyceae. British Phycological Journal, 9 (3), 291–295. doi:10.1080/00071617400650351
  49. ^ "Kohlenhydrate mit niedrigem Molekulargewicht in roten Algen - eine ökophysiologische und biochemische Perspektive", Springerlink. (n.d.). Abgerufen am 16. Oktober 2019 von https://link.springer.com/chapter/10.1007/978-90-481-3795-4_24
  50. ^ Clinton JD, Scott FM, Bowler E (November - Dezember 1961). "Eine licht- und elektronenmikroskopische Untersuchung der Algenzellwände. I. Phaeophyta und Rhodophyta". American Journal of Botanik. 48 (10): 925–934. doi:10.2307/2439535. JStor 2439535.
  51. ^ a b Lee Re (2008). Phykologie (4. Aufl.). Cambridge University Press. ISBN 978-0-521-63883-8.
  52. ^ "Pit Plugs". FHL Marine Botanik. Abgerufen 2016-06-30.
  53. ^ In Archibald, J. M., in Simpson, A. G. B., & in Slamovits, C. H. (2017). Handbuch der Protisten.
  54. ^ a b c Kohlmeyer, J. (Februar 1975). "Neue Hinweise auf den möglichen Ursprung von Ascomyceten". Bioscience. 25 (2): 86–93. doi:10.2307/1297108. JStor 1297108.
  55. ^ a b Maberly, S. C.; Raven, J. A.; Johnston, A. M. (1992). "Diskriminierung zwischen 12C und 13C von Meerespflanzen ". Oecologia. 91 (4): 481. doi:10.1007/bf00650320. JStor 4220100.
  56. ^ Chen, F., Zhang, J., Chen, J., Li, X., Dong, W., Hu, J.,… Zhang, L. (2018). Readb: Ein Genom- und Transkriptom -Ressource für die roten Algen (Phylum rhodophyta). Datenbank, 2018. https://doi.org/10.1093/database/bay072
  57. ^ Matsuzaki; et al. (April 2004). "Genomsequenz der ultrasall einzellulären roten Alge Cyanidioschyzon Merolae 10d ". Natur. 428 (6983): 653–657. Bibcode:2004natur.428..653m. doi:10.1038/nature02398. PMID 15071595.
  58. ^ Nozaki; et al. (2007). "Eine 100%-Complete-Sequenz zeigt ungewöhnlich einfache genomische Merkmale in der Hot-Fring-Red-Alge Cyanidioschyzon Merolae". BMC -Biologie. 5: 28. doi:10.1186/1741-7007-5-28. PMC 1955436. PMID 17623057.
  59. ^ Schönknecht; et al. (März 2013). "Gentransfer aus Bakterien und Archaea erleichterte die Evolution eines extremophilen Eukaryote". Wissenschaft. 339 (6124): 1207–1210. Bibcode:2013Sci ... 339.1207s. doi:10.1126/science.1231707. PMID 23471408. S2CID 5502148.
  60. ^ Nakamura; et al. (2013). "Die erste symbionfreie Genomsequenz von marinen Red Alga, Susabi-Nori (Pyropia yezoensis) ". PLUS EINS. 8 (3): E57122. Bibcode:2013ploso ... 857122n. doi:10.1371/journal.pone.0057122. PMC 3594237. PMID 23536760.
  61. ^ Collen; et al. (2013). "Genomstruktur und metabolische Merkmale im roten Seetang Chondrus Crispus vergießen Licht auf die Entwicklung der Archaplastida". PNAs. 110 (13): 5247–5252. Bibcode:2013pnas..110.5247c. doi:10.1073/pnas.1221259110. PMC 3612618. PMID 23503846.
  62. ^ Bhattacharya; et al. (2013). "Genom des roten Alge Porphyridium purpureum". Naturkommunikation. 4: 1941. Bibcode:2013natco ... 4.1941b. doi:10.1038/ncomms2931. PMC 3709513. PMID 23770768.
  63. ^ Brawley, Sh; Blouin, NA; Ficko-Blean, e; Wheeler, GL; et al. (1. August 2017). "Einblicke in die roten Algen und die eukaryotische Entwicklung aus dem Genom von Porphyra Nabelisch (Bangiophyceae, Rhodophyta) ". Verfahren der Nationalen Akademie der Wissenschaften der Vereinigten Staaten von Amerika. 114 (31): e6361–e6370. doi:10.1073/pnas.1703088114. PMC 5547612. PMID 28716924.
  64. ^ Ho, C.-L.; Lee, W.-K.; Lim, E.-L. (2018). "Die nuklearen und Chloroplastengenome eines Agars, das rote Makroalga produziert, gracilaria changii (Rhodophyta, Gracilariales)". Genomik. 110 (2): 124–133. doi:10.1016/j.ygeno.2017.09.003. PMID 28890206.
  65. ^ Qiu, H.; Preis, D. C.; Weber, A. P. M.; Reeb, V.; Yang, E. C.; Lee, J. M.; Bhattacharya, D. (2013). "Anpassung durch horizontale Gentransfer im kryptoendolithischen roten Alga Galdieria Phlegrea". Current Biology. 23 (19): R865 - R866. doi:10.1016/j.cub.2013.08.046. PMID 24112977.
  66. ^ Zhou, W.; Hu, y.; Sui, Z.; Fu, F.; Wang, J.; Chang, L.; Li, B. (2013). "Genomumfrage Sequenzierung und genetische Hintergrundcharakterisierung von Gracilariopsis lemananiformis (Rhodophyta) basierend auf Sequenzierung der nächsten Generation". PLUS EINS. 8 (7): e69909. Bibcode:2013ploso ... 869909z. doi:10.1371/journal.pone.0069909. PMC 3713064. PMID 23875008.
  67. ^ Junmo Lee, Eun Chan Yang, Louis Graf, Ji Hyun Yang, Huan Qiu, Udi Zelzion, Cheong Xin Chan, Timothy G Stephens, Andreas PM Weber, Ga Hun Boo, gesungener Min Boo, Kyeong Mi Kim, Younhee Shin, Myunghee Jung, Jung, Jung,, Seung Jae Lee, Hyung-soon Yim, Jung-Hyun Lee, Debashish Bhattacharya, Hwan Su Yoon, "Analyse des Entwurfs des Genoms des Roten Seetangs Gracilariopsis chorda liefert Einblicke in die Genomgröße Evolution" in der Genomgröße "in der Evolution der Genomgröße" in " Rhodophyta, Molekularbiologie und Evolution, Band 35, Ausgabe 8, August 2018, S. 1869–1886, doi:10.1093/molbev/MSY081
  68. ^ Bengtson, S; Sallstedt, t; Belivanova, V; Whitehouse, M (2017). "Dreidimensionale Erhaltung von zellulären und subzellulären Strukturen legt nahe, dass eine rotes Algen der Kronengruppe 1,6 Milliarden Kronengruppen". PLOS Biol. 15 (3): E2000735. doi:10.1371/journal.pbio.2000735. PMC 5349422. PMID 28291791.
  69. ^ Grant, S. W. F.; Knoll, A. H.; Germs, G. J. B. (1991). "Wahrscheinliche verkalkte Metaphyten in der neuesten proterozoischen NAMA -Gruppe Namibia: Herkunft, Diagenese und Implikationen". Journal of Paläontologie. 65 (1): 1–18. doi:10.1017/s002233600002014x. JStor 1305691. PMID 11538648. S2CID 26792772.
  70. ^ Yun, Z.; Xun-Lal, Y. (1992). "Neue Daten zu mehrzelligen Thallophyten und Fragmenten von zellulären Geweben aus späten proterozoischen Phosphatgesteinen, Südchina". Lethaia. 25 (1): 1–18. doi:10.1111/j.1502-3931.1992.tb01788.x.
  71. ^ Zusammengefasst in Cavalier-Smith, Thomas (April 2000). "Membranererung und frühe Chloroplastenentwicklung". Trends in der Pflanzenwissenschaft. 5 (4): 174–182. doi:10.1016/s1360-1385 (00) 01598-3. PMID 10740299.
  72. ^ a b Wang, T., Jónsdóttir, R., Kristinsson, H. G., Hreggvidsson, G. O., Jónsson, J. Ó. "Enzymverstärkte Extraktion von antioxidativen Inhaltsstoffen aus rotem Algen Palmaria palmata". LWT - Lebensmittelwissenschaft und Technologie43 (9), 1387–1393. doi:10.1016/j.lwt.2010.05.010
  73. ^ Hasan, Muhammad Mohtasheemul (2017-06-01). "Algen als Ernährung, Medizin und Kosmetik: Die vergessene Geschichte, der gegenwärtige Status und zukünftige Trends". World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences: 1934–1959. doi:10.20959/WJPPS20176-9447. ISSN 2278-4357.
  74. ^ Macartain, P.; Gill, C. I. R.; Brooks, M.; Campbell, R.; Rowland, I. R. (2007). "Ernährungswert von essbaren Seetang". Ernährungsbewertungen. 65 (12): 535–543. doi:10.1111/j.1753-4887.2007.tb00278.x. PMID 18236692. S2CID 494897.
  75. ^ Becker, E. W. (März 2007). "Mikroalgen als Proteinquelle". Biotechnologie Fortschritte. 25 (2): 207–210. doi:10.1016/j.biotechadv.2006.11.002. PMID 17196357.
  76. ^ "Dulse: Palmaria Palmata". Qualitäts Gemüse. Abgerufen 2007-06-28.
  77. ^ T. F. Mumford & A. Muira (1988). "Porphyra als Nahrung: Anbau und Wirtschaft “. In C. A. Lembi & J. Waaland (Hrsg.). Algen und menschliche Angelegenheiten. Cambridge University Press, Cambridge. ISBN 978-0-521-32115-0.
  78. ^ V. Gressler, N. S. Yokoya, M. T. Fujii, P. Colepicolo, J. M. Filho, R. P. Torres & E. Pinto (2010). "Lipid, Fettsäure, Protein, Aminosäure und Asche in vier brasilianischen Rotalgenarten". Lebensmittelchemie, 120 (2), 585–590. doi:10.1016/j.foodchem.2009.10.028
  79. ^ Hoek, C. van Den, Mann, D.G. und Jahns, H.M. (1995). Algen Eine Einführung in die Phykologie. Cambridge University Press, Cambridge. ISBN0521304199
  80. ^ Dhargalkar VK, Verlecar xn. "Seetang im Südlichen Ozean: Eine Ressource für Erkundungen in Lebensmitteln und Drogen". Aquakultur 2009; 287: 229–242.
  81. ^ "Über den menschlichen Verbrauch des roten Seetangs Dulse (Palmaria Palmata (L.) Weber & Mohr)". ResearchGate.net. Dezember 2013.{{}}: CS1 Wartung: URL-Status (Link)
  82. ^ Manivannan, K., Thirumaran, G., Karthikai, D. G., Anantharaman. P., Balasubramanian, P. (2009). "Phase der Zusammensetzung verschiedener Gruppe von Algen aus Vedalai Coastal Waters (Golf von Mannar): Südostküste Indiens". Middle-Ost J. Scientific Res., 4: 72–77.

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